是不是细胞污染？是哪种细胞污染？如何识别？
细胞中如果污染**，*常见的有枯草杆菌等革兰阳性菌以及大肠杆菌、假单孢菌等革兰阴性菌，其中又以白色葡萄球菌较常见。培养细胞受**污染后，会很快出现培养液变混浊，pH 改变。
也有少数培养液肉眼观察无多少改变，只能在镜下发现菌体才知污染。所以，每天应仔细观察。污染后细胞发生病理改变，胞内颗粒增多、增粗，*后变圆脱落死亡，造成实验失败和细胞株(系)丢失。
**在普通倒置显微镜下为黑色细沙状，根据感染**的不同，可有不同的外形，培养液一般会浑浊变黄，对细胞生长影响明显。
如何预防
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仔细检查一下器皿的**情况，是否在高压**时放气时间足够、压力足够。
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重点检查和储存培养液接触的移液管等物品，连续两次污染的话有可能造成储存液污染，一定要注意。
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下次使用前检查一下培养液是否存在浑浊的现象，可在培养液中加相应的***处理。
霉菌污染以后，培养液是清亮的，倒置显微镜下无杂质，37 度孵箱培养 2-3 天，仍清亮，但出现絮状杂质。镜下可见呈细丝状的团状漂浮物，可看到明显的菌丝，细胞仍可生长，但时间长之后，细胞的活力状态变差。
用硫酸铜溶液擦拭 CO2 孵箱内，再把水盘里也加上饱和量的硫酸铜。或者在培养箱的托盘加入饱和的**磷酸氢二钠高盐液体, 可以防止霉菌污染。
CO2 孵箱被霉菌污染后，可把所有细胞暂时转移，采用过氧乙酸擦洗孵箱（包括隔板，箱壁）。并把过氧乙酸放置在孵箱内一个小时，使其蒸汽弥漫。待过氧乙酸的气味消散后，再移入细胞。孵箱应定期清洁（2 月左右），尤其在多雨的季节。
其它培养箱清洗方法是：用 84 液擦洗－清水擦洗－75% 酒精擦洗－紫外灯照。
如何预防
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可在培养基里加 3u/mL 的两性霉素或制霉菌素或放线菌素 D 或双抗。
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细胞一旦污染，很难挽救，制霉菌素或放线菌素 D 或双抗都于事无补，建议舍弃该污染细胞。
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将环境彻底**，如果所有细胞都污染，可能是系统污染，检查一下培养基和器材，如果只是个别污染，可能是操作问题，就要注意操作。
上图是典型的霉菌污染，肉眼看到白色的团块或白点，镜下呈丝状。400 倍图片如上。
支原体感染细胞以后，细胞病变不很明显，只是慢慢死去。培养液一般会浑浊。
国内血清很多都没有做支原体阴性检测，而支原体是牛血清中*常见的微生物之一。而且它不能用过滤的办法除去。可用泰乐菌素——兽用支原体病的药，无任何**反应。如果用的是 Sigma 公司的，使用时用 50u g/mL Tylosin 培养液培养 6 天或连续传两代即可**支原体污染。如果作为常用的***的话, 建议用 8 ug/mL
一般培养液清亮，不变色，镜下有丝状物，有些**开始很像死细胞碎片，只是它很多很多的小块很清楚，象珊瑚状，不象细胞碎片分不清，慢慢的会长出很细的黑色丝状物。
**生长的比较慢，不象**那么容易被发现，但是一旦发现有它的存在细胞就被污染了，也很难救活了。
培养液可轻微浑浊，显微镜下那些细小的点状物数量非常多，轻微活动，细胞虽然可以生长但繁殖速度却明显减慢，而且细胞状态不好，边缘不清楚，细胞不透亮。他们与细胞可共生但会与细胞争夺营养。这种共生是非常普遍的，但他们的数量小，细胞占优势所以不会影响到细胞的正常生长，只有当他们到达一定的数量时就会影响到细胞的生长，*终形成恶性循环。
污染的可能原因：配液**问题、操作问题、环境问题等等。
关于培养基的无菌状况，取培养基至培养瓶中（不加细胞），37 度试培养一段时间后观察。如果没有**生长 就是操作的问题。也可以在培养基中事先加入双抗（硫酸链霉素和氨苄青霉素）。但双抗有时会影响细胞的状态，所以在做转染、检测细胞某项指标前一定要撤去双抗，以避免影响实验结果。
如何预防
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孵箱应定期用三氧机**或者紫外光照射，并用酒精和新洁尔灭试擦孵箱，同时孵箱内的水应是三蒸水。
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超净台、取材、器材、培养液、培养瓶、操作等因素
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超净台的风机不能过大，风机到 6-8 格。否则也可能能致霉菌污染。
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无菌室经甲醛熏蒸**后，可用同等量的氨水喷洒中和，约几小时即可进入操作。
